DEPENDENCE OF CYTOKINE CONCENTRATION IN COPROEXTRACTS OF CHILDREN WITH INFLAMMATORY BOWEL DISEASES ON DISEASE ACTIVITY


Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

Background. Inflammatory bowel diseases (IBD) such as Crohn's disease (CD) and ulcerative colitis (UC) affect more than 6.8 million people. The key point in the immunopathogenesis of these diseases is the infiltration of the intestinal wall by various immunocompetent cells and their production of pro-inflammatory cytokines.

The aim of the study was to compare the levels of 14 cytokines in the coproextracts of IBD patients with various disease activity.

Methods.  The examined cohort consisted of 30 children with CD, 33 children with UC, and 20 apparently healthy children of the control group. The diagnosis of UC and CD was established according to generally accepted clinical and endoscopic criteria. The concentration of 14 cytokines (IL1β, IL-4, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-17F, IL-21, IL-22, IL-23, IL-25, IL-31, IL- 33, IFNγ and TNF) in aqueous-salt coproextrates were determined using the multiplex method (MagPix, BioRad, USA).

Results. It was shown that the levels of all studied cytokines were significantly increased in all sick children, even in remission, compared with the control group. Pro-inflammatory cytokines (TNF, IL-1β, IL-6, IL-17A, IL-17F) consistently decreased in the coproextracts of CD and UC patients as disease activity decreased. At the same time, the levels of IL-22, IL-33 and IL-10, on the contrary, increased as the activity of inflammation decreased.

Conclusion. The lack of normalization of cytokine levels in remission raises the question of the need for further study of the immunopathogenesis of IBD and the search for new therapeutic approaches.

Full Text

ЗАВИСИМОСТЬ КОНЦЕНТРАЦИИ ЦИТОКИНОВ В КОПРОЭКСТРАКТАХ ДЕТЕЙ С ВОСПАЛИТЕЛЬНЫМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ КИШЕЧНИКА ОТ АКТИВНОСТИ ЗАБОЛЕВАНИЯ.

Введение

Воспалительные заболевания кишечника (ВЗК) являются иммуноопосредованными воспалительными заболеваниями, включающими болезнь Крона (БК) и язвенный колит (ЯК). Более 6,8 миллионов человек в мире страдают этими заболеваниями [1]. Этиологическими факторами ВЗК признаны генетические, микробиологические (длительное нарушение микробиоты кишечника), факторы окружающей среды и нарушение баланса врожденного и адаптивного иммунитета. Ключевым моментом в иммунопатогенезе ВЗК считается инфильтрация стенки кишечника различными иммунокомпетентными клетками и продукция ими провоспалительных цитокинов [2]. Однако цитокиновая сеть охватывает не только клетки иммунной системы. Эпителиальные, эндотелиальные, мезенхимальные клетки, клетки печени, нервной и эндокринной систем также активно участвуют в продукции и рецепции цитокинов, внося вклад в воспалительные реакции. Цитокины являются универсальным языком межклеточного общения. Они осуществляют связь между различными клетками организма и координируют эффекты врожденного и адаптивного иммунитета [3]. Для ВЗК типично вовлечение в патологический процесс провоспалительных цитокинов, таких как интерлейкин (IL)-1β, фактор некроза опухолей (TNF). Традиционно БК связывают с Th1 и Th17 типами иммунного ответа и продукцией IL-12, IL-23, IL-17 и интерферона-γ (IFNγ). Для ЯК более типичным является Th2 тип ответа и продукция IL-4, IL-5 и IL-13 [1]. Однако позже было показано, что существуют и обратные зависимости. На данный момент считается, что ключевую роль играет именно дисбаланс в иммунорегуляторных механизмах, приводящий к нарушению контроля за продукцией цитокинов на местном уровне. Дисфункция местного иммунитета кишечника и дисбаланс цитокиновой сети рассматривается как основное звено иммунопатогенеза ВЗК, поддерживающее воспаление в стенке кишечника [4]. Изучение местного иммунитета кишечника при ВЗК представляет достаточно сложную задачу, так как исследования на мышиных моделях не совсем точно отражают ситуацию в человеческом организме, а исследование биоптатов кишечника больного человека весьма травматично и чревато осложнениями, поскольку стенка кишечника и без того поражена воспалением [5]. Следует отметить, что у детей отмечается более агрессивное течение ВЗК, по сравнению со взрослыми, а иммунные механизмы патогенеза ВЗК изучены гораздо хуже. Ранее нами была показана возможность определять цитокины в копроэкстрактах больных ВЗК для оценки состояния местного иммунитета кишечника. Уровень основных исследованных цитокинов у детей с ВЗК был значимо повышен, по сравнению с контрольной группой [6].

Целью настоящего исследования было сопоставление уровней 14-и цитокинов в копроэкстрактах педиатрических пациентов с ВЗК с активностью заболевания.

Материалы и методы

В простое сравнительное исследование были включены 83 ребенка (48 мальчиков и 35 девочек) в возрасте 6-17 лет, в том числе 30 детей с БК (группа 1), 33 ребенка с ЯК (группа 2) и 20 условно здоровых детей, составивших контрольную группу (группа 3). Диагноз у детей групп 1 и 2 был установлен на основании анамнеза, клинико-лабораторных, эндоскопических и гистологических критериев Леннарда-Джонса. Фенотип заболевания определяли на основе Монреальской классификации. Длительность заболевания на момент обследования варьировала от 1 мес. до 12 лет, в среднем составила 4,3 года. Активность заболевания у детей с болезнью Крона оценивали с помощью индекса PCDAI (Pediatric Chron's Disease Activity Index), активность язвенного колита оценивали на основании индекса PUCAI (Pediatric Ulcerative Colitis Activity Index). Исследование было проведено в соответствии с Хельсинкской декларацией и одобрено местными этическими комитетами. От родителей пациентов было получено  письменное информированное согласие.

Водно-солевой копроэкстракт получали смешивая один объем фекалий с тремя объемами забуференного фосфатами физиологического раствора, перемешивали и центрифугировали при 3000 об/мин 15 мин. Цитокины определяли в надосадочной жидкости. Для контрольной группы разведение биологического материала было 1:4, а для групп 1 и 2 конечное разведение составило 1:40, так как ранее было показано, что у больных ВЗК уровень цитокинов существенно выше [6].

Концентрацию 14-и цитокинов (IL1β, IL-4, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-17F, IL-21, IL-22, IL-23, IL-25, IL-31, IL-33, IFNγ и TNF) в водно-солевых копроэкстратах определяли с помощью мультиплексного метода (MagPix, BioRad, США) с использованием коммерческих тест-систем Th17-Plex, согласно инструкции производителя.

Полученные результаты были исследованы на предмет нормальности распределения методом Колмогорова-Смирнова. В случае подтверждения нормальности распределения признака применяли параметрическую статистику с вычислением средней арифметической и стандартной ошибки (М±SE), а в случае не подтверждения нормальности распределения применяли непараметрические методы с вычислением медианы, первой и третьей квартили (Me (LQ-HQ)). Различия оценивали методом Манн-Уитни, значимыми считали различия при p < 0,05. Корреляции рассчитывали методом Пирсона.

Результаты

На основании значений индексов активности заболевания больные дети групп 1 и 2 были разделены на подгруппы (табл. 1). Коэффициент корреляции между клиническим индексом активности БК PCDAI и эндоскопическим индексом активности заболевания SES-CD составил 0,353, что свидетельствует о слабой положительной связи, а для индекса активности ЯК PUCAI и соответствующим эндоскопическим индексом UCEIS – 0,704, что свидетельствует о сильной положительной связи.

Результаты определения цитокинов в копроэкстрактах здоровых детей представлены в табл. 2. Уровень цитокинов в копроэкстрактах здоровых детей невысокий, но вполне определяемый. Для пациентов групп 1 и 2 уровни цитокинов были подсчитаны в зависимости от активности заболевания и представлены на графиках. Следует сразу подчеркнуть, что в копроэкстрактах больных из групп 1 и 2 уровни цитокинов превышали соответствующие уровни цитокинов группы сравнения в 5 - 30 раз, то есть для всех больных ВЗК детей  различия в уровнях всех исследованных цитокинов были высоко значимы по сравнению с группой 3 (p < 0,000). Поскольку уровни разных цитокинов различались иногда в десятки раз, цитокины на графиках были сгруппированы в соответствии с диапазоном полученных значений для удобства графического представления.

На рис. 1А видно, что уровень провоспалительных цитокинов в группе 1 (БК) прогрессивно снижался от уровня с высокой активностью заболевания до уровня в ремиссии. Для TNF такое снижение составило с 169,16 (153,35-178,25) пг/мл до 84,88 (78,3-92,85) пг/мл, p < 0,05. Для детей с ЯК (группа 2, рис. 1Б) аналогичное снижение составило с 110,5 (78,4-126,2) пг/мл до 71,65 (66,83-85,13) пг/мл, p < 0,05. Похожая динамика была обнаружена для IL-17A. У детей с БК (группа 1) выявлено снижение с 162,17 (143,7-184,27) пг/мл до 84,07 (65,28-91,43) пг/мл, p < 0,05, а у детей с ЯК (группа 2) – с 119,26 (96,95-126,28) пг/мл до 73,28 (60,36-82,58) пг/мл, p < 0,05. Для противовоспалительного цитокина IL-10 в группе 1 выявлена обратная зависимость, он нарастал с уменьшением активности заболевания с 194,78 (143,01-246,36) пг/мл до 287,85 (279,26-335,29) пг/мл, p < 0,05. Обнаружена отрицательная корреляция средней силы между индексом PCDAI и уровнем IL-10 (r= -0,401). В группе 2 выявлена другая тенденция: IL-10 сначала нарастал с уровня высокой активности 143,01 (130,51-175,01) пг/мл до уровня низкой активности 207,02 (204,76-232,9) пг/мл, p < 0,05, а в подгруппе с ремиссией значимо снизился до 152,76 (107,58-196,2) пг/мл, p < 0,05. При этом уровень IL-25, цитокина, выделяемого поврежденными клетками эпителия, практически не зависел от активности клинических проявлений и колебался в диапазоне 225-250 пг/мл в обеих группах.

Представленные на рис. 2 уровни провоспалительных цитокинов, таких как IL-1β, IL-6 и IL-17F, по мере снижения активности заболевания постепенно снижались, составив для IL-1β в группе 1 при высокой активности 471,85 л (391,32-498,17) пг/м и снизившись в ремиссии до 291,02 (284,5-307,19) пг/мл, p < 0,05. В группе 2 (рисунок 2Б) обнаружено такое же снижение с 481,4 (372-567,08) пг/мл до 247,03 (241,03-253,3) пг/мл, p < 0,05. Выявлена положительная корреляция средней силы между индексом PUCAI и уровнем IL-1β (r=0,476). Снижение уровня IL-6 было не столь выражено. В группе 1 его уровень снизился с 458,29 (360,5-481,07) пг/мл до 376,88 (374,1-400,22) пг/мл, а в группе 2 с 389,6 (374,1-422,91) пг/мл до 333,5 (320,2-353,75) пг/мл.  Более выраженная динамика отмечена для IL-17F. В группе 1 его уровень снизился с 564,41 (474,93-595,8) пг/мл до 424,52 (404,37-455,81) пг/мл, p < 0,05, а в группе 2 с 547,48 (434,06-581,04) пг/мл до 396,69 (357,04-413,85) пг/мл, p < 0,05. Обнаружена положительная корреляция средней силы между индексом PUCAI и уровнем IL-17F (r=0,493). Обращает внимание, что уровень IFNγ не зависел от активности заболевания и не значимо колебался в диапазоне 240-280 пг/мл в обеих группа. Интересно, что для IL-4 в исследованных группах пациентов выявлены разнонаправленные изменения. Если у больных ЯК его концентрация прогрессивно снижалась по мере снижения активности с 413,83 (334,9-449,14) пг/мл до 275,7 (212,73-334,9) пг/мл, p < 0,05 в ремиссии, то при БК она, напротив, нарастала с 411,86 (375,7- 449,14) до 569,58 (461,53-746,62) пг/мл, p < 0,05. Выявлена отрицательная корреляция средней силы между индексом PCDAI и уровнем IL-4 (r= -0,452).

На рис. 3 представлены результаты определения уровня цитокинов, отвечающих за репарацию эпителия. Они демонстрируют сходные тенденции. Так концентрация IL-22 по мере снижения активности заболевания нарастала с 375,30 (245,73-391,59) пг/мл до 532,13 (374,48-721,1) пг/мл, p < 0,05 в группе 1 и с 385,89 (294,65-431,99) пг/мл до 796,91 (515,05-1247,44) пг/мл, p < 0,05 в группе 2. Уровень IL-33 также возрастал с 143,19 (107,13-173,66) пг/мл до 358,12 (273,6-490,77) пг/мл, p < 0,05 в группе 1 и с 173,24 (107,13-235,2) пг/мл  до 484,97 (407,88-679,26) пг/мл, p < 0,05 в ремиссии в группе 2. Выявлены отрицательные корреляции средней силы между индексом PCDAI и уровнем IL-22 (r = -0,409), а для уровня IL-33 (r= - 0,467).

Результаты исследования концентрации IL-23, IL-31 и IL-21 представлены на рис. 4. Уровень IL-23 демонстрировал тенденцию к снижению по мере снижения активности заболевания с 6003,75 (5737,8-6269,7) пг/мл до 5555,22 (4886,4-5950,5) пг/мл в группе 1 и с 5737,68 (5311,8-6163,2) пг/мл до 5311,95 (4886,4-5418,3) пг/мл в группе 2, однако различия оказались не значимыми. Концентрация IL-31 в группе 1 снизилась с 1579,14 (903,15-1991,91) пг/мл до 1051,12 (838,95-1178,67) пг/мл, p < 0,05, а в группе 2 снижение с 733,35 (499,29-923,56) пг/мл до 499,29 (377,52-669,135) проявилось лишь как тенденция. Уровень IL-21 не зависел от активности заболевания и колебался в диапазоне от 2703,27 до 3489,02 пг/мл в обеих группах.

Обсуждение

В результате проведенных исследований было показано, что все 14 изученных нами цитокинов вовлечены у детей в иммунопатогенез ВЗК. Все они были значимо повышены по сравнению с результатами обследования группы здорового контроля. Важно отметить, что провоспалительные цитокины, такие как TNF, IL-1β и IL-6 последовательно снижались в копроэкстрактах больных БК и ЯК по мере снижения активности заболевания. Это свидетельствует о том, что снижение клинических индексов, по которым оценивается активность ВЗК, соответствует снижению активности воспаления на местном уровне. При этом уровень IL-23 был очень высоким при обеих нозологиях, хотя и демонстрировал тенденцию к снижению по мере снижения активности заболевания. Известно, что комбинация IL-6, IL-23 и IL-1β способствует индукции Th17 ответа. Действительно, уровни IL-17A и IL-17F у обследованных детей были повышены в 8-10 раз относительно уровней контрольной группы при высокой активности заболевания, тогда как в ремиссии такое превышение было в 5-6 раз. Связывание IL-17 с рецептором регулирует функции кишечного барьера и способствует высвобождению провоспалительных цитокинов, поддерживающих воспаление [7]. Таким образом, выявленное нами снижение уровней IL-17 в копроэкстрактах больных ВЗК в ремиссии также свидетельствует о снижении активности местного воспаления. Однако даже в стадии ремиссии цитокины, производимые Th17, остаются значимо повышенными, поддерживая патологическое воспаления в кишечнике, что было показано и другими исследователями [8]. Такой цитокин как IL-21 считается маркером Tfh, однако его также производят и Th17 клетки, поэтому сохраняющийся высокий уровень этого цитокина независимо от активности заболевания также свидетельствует о сохранении активности Th17 даже в стадии ремиссии. Наши данные об уровне IL-21 согласуются с результатами, полученными при исследовании биоптатов больных БК и ЯК, где показано, что этот цитокин был значимо повышен и его уровень не коррелировал ни с активностью заболевания, ни с проводимым лечением [9].

Исследование цитокинов-маркеров Th1/Th2 субпопуляций (IFNγ и IL-4) показало, что уровень IFNγ практически не зависит от стадии заболевания и значимо не различается в группах с БК и ЯК. Однако, если оценить соотношение IFNγ/IL-4 в копрофильтратах, то в группе здоровых этот коэффициент равен 1,45, что свидетельствует о преобладании IFNγ. При высокой активности в группах 1 и 2 он оказался сниженным до 0,67 (преобладание IL-4), а в стадии ремиссии у больных ЯК он повысился до 0,87, хотя был все еще ниже, чем у здоровых, а в группе БК продолжил снижаться до 0,48. Возможно, такие различия отражают разное участие Th1 и Th2 субпопуляций в патогенезе этих нозологий [10]. Если учесть, что для БК типичен Th1 ответ, то снижение индекса IFNγ/IL-4 у больных в ремиссии говорит о подавлении такого ответа, тогда как в группе больных ЯК, для которых типичен Th2 ответ, напротив, повышение этого индекса в ремиссии говорит о подавлении этого ответа. Обе ситуации следует рассматривать как положительные.

Цитокины IL-22 и IL-33 ответственны за репарацию эпителиальных клеток. В частности, IL-22 поддерживает функции эпителиального барьера, способствует продукции слизи и антимикробных пептидов [11]. Интересно, что IL-33 защищает от воспаления в кишечнике, способствуя индукции Treg и синтезу амфирегулина, который отвечает за репарацию эпителия [12].  Повышение уровней этих цитокинов по мере снижения активности заболевания может свидетельствовать об усилении процессов репарации кишечного эпителия. Методом иммуногистохимии в биоптатах больных БК было также показано нарастание уровня IL-33 после лечения пациентов с помощью анти-TNF препаратов и снижения активности заболевания [9].

Известно, что IL-25 активно секретируется поврежденными эпителиальными клетками, сигнализируя иммунокомпетентным клеткам о необходимости защиты. Более того, оказалось, что IL-25 может подавлять активность Th17 [13]. При исследовании кишечных биоптатов взрослых больных ВЗК обнаружено снижение экспрессии РНК для IL-25 и экспрессии самого цитокина [14], что не соответствует нашим данным, выявившим повышение уровня IL-25 в копроэкстрактах больных ВЗК. Такие различия могут быть связаны с тем, что при биопсии выбирают наиболее пораженный участок кишечника. В результате длительной персистенции воспаления в этом участке способность эпителиальных клеток к синтезу IL-25, как и жизнеспособность самих этих клеток, может быть нарушена. При исследовании концентрации цитокина в копроэкстракте, мы имеем суммарный уровень, который может быть обеспечен повреждением эпителиальных клеток по краю очага воспаления, которые недавно были вовлечены в воспаление и способны еще синтезировать IL-25. Более того, оказалось, что IL-25 способствует снижению продукции IFNγ, TNF и IL-17A за счет усиления продукции IL-10 [15], следовательно, повышенный уровень IL-25 следует рассматривать как протективный.

Противовоспалительный цитокин IL-10 продуцируется преимущественно субпопуляцией Treg и направлен на подавление активности воспаления, поэтому повышение его уровня по мере снижения активности воспалительного процесса следует рассматривать как позитивный факт.

Заключение

Несмотря на всю вышеперечисленную позитивную динамику снижения уровней провоспалительных цитокинов и повышение концентрации противовоспалительных цитокинов по мере снижения активности ВЗК, следует подчеркнуть, что у детей даже в периоде ремиссии уровни исследованных цитокинов значимо отличались от соответствующих уровней группы здорового контроля. Важно, что все больные дети находились на плановой терапии в соответствии с различными протоколами. В терапии были использованы: 5-аминосалициловая кислота, азатиоприн, глюкокортикоиды, генно-инженерные биологические препараты и различные комбинации этих препаратов. При этом даже при достижении ремиссии уровни цитокинов в копроэкстрактах были значимо повышены, что свидетельствует о том, что при достижении клинической ремиссии на фоне лечения не достигается полной иммунологической ремиссии. Активность воспаления при лечении ВЗК может снизиться до субклинического уровня, но патологический процесс не исчезает и может быть выявлен иммунологическими методами. Из этого следуют два вывода. Во-первых, известные на данный момент схемы лечения ВЗК не излечивают болезнь, а лишь снижают ее активность, и при отмене терапии крайне высока вероятность обострения заболевания. Во-вторых, остается актуальной задача более детального изучения иммунопатогенеза ВЗК и поиска принципиально новых подходов к терапии этих тяжелых заболеваний.

Таблица 1

Table 1  

Распределение детей по степени активности заболевания

Children distribution according to the degree of disease activity

 

Клиническая активность/

Clinical activity

Болезнь Крона  / Crohn's disease

(группа 1 / group 1)

Язвенный колит / Ulcerative colitis (группа 2 / group 2)

Количество детей / Number of children

Индекс / Index  PCDAI

Количество детей / Number of children

Индекс / Index PUCAI

Ремиссия / Remission

9

8,33±0,83

8

6,88±0,86

Низкая активность / Low activity

-

-

9

21,67±2,36

Умеренная активность / Moderate activity

14

20,54±1,72

11

40,45±1,75

Высокая активность / High activity

7

46,79±3,38

5

66±1,86

 

 

 

Таблица 2

Table 2

Концентрация цитокинов в копроэкстрактах здоровых детей (пг/мл)

Me (LQ-HQ)

Cytokine concentration in coproextracts of healthy children (pg/ml)

Me (LQ-HQ)

IL1β

IL4

IL6

IL10

IL17A

IL17F

IL21

IL22

IL23

IL25

IL31

IL33

IFNγ

TNF

38

(32-49,25)

34,52

(25,18-

50,37)

44

(39,25-

48,75)

59,65

(45,17-

67,65)

13,85

(9,37-

18,64)

64,74

(53,92-

95,63)

389,34

(255,98-

481,12)

53,03

(24,57-

71,13)

92,96

(92,96-

318,22)

19,74

(17,8-

22,95)

45,39

(38,33-

63,92)

42,43

(22,35-

57,55)

60,49

(48,39-

70,9)

3,33

(0,57-

7,33)

 

Подписи к рисункам

 

Рис. 1. Изменение уровней про- и противовоспалительных цитокинов в копроэкстрактах детей с воспалительными заболеваниями кишечника в зависимости от клинической активности заболевания.

А – болезнь Крона

Б – язвенный колит

Fig. 1. Changes in the levels of pro- and anti-inflammatory cytokines in coproextracts of children with inflammatory bowel diseases depending on the disease clinical activity.

A – Crohn's disease

B – ulcerative colitis

 

Рис. 2. Зависимость уровней провоспалительных цитокинов в копроэкстрактах детей с воспалительными заболеваниями кишечника от клинической активности заболевания.

А – болезнь Крона

Б – язвенный колит

Fig. 2. Dependence of the proinflammatory cytokines levels in coproextracts of children with inflammatory bowel diseases on the disease clinical activity.

A – Crohn's disease

B – ulcerative colitis

 

Рис. 3. Изменение уровней цитокинов, ответственных за репарацию эпителия, в копроэкстрактах детей с воспалительными заболеваниями кишечника в зависимости от клинической активности заболевания.

А – болезнь Крона

Б – язвенный колит

Fig. 3. Changes in the cytokines levels responsible for epithelial repair in coproextracts of children with inflammatory bowel diseases depending on the disease clinical activity.

A – Crohn's disease

B – ulcerative colitis

 

Рис.4. Зависимость уровней IL-21, IL-23 и IL-31 в копроэкстрактах детей с воспалительными заболеваниями кишечника от клинической активности заболевания.

А – болезнь Крона

Б – язвенный колит

Fig.4. Dependence of IL-21, IL-23 and IL-31 levels in coproextracts of children with inflammatory bowel diseases on the disease clinical activity.

A – Crohn's disease

B – ulcerative colitis

 

×

About the authors

Anna P. Toptygina

G.N.Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology, Moscow, Russia; Lomonosov Moscow State University

Author for correspondence.
Email: toptyginaanna@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-9981-4762
SPIN-code: 8523-5018

PhD, MD (Medicine), Chief Research Associate, Head of Laboratory of Cytokines; Professor Chair of Immunology

Russian Federation, 10 Admiral Makarov Street, Moscow, 125212, Russia

Elena L. Semikina

Federal State Autonomous Institution "National Medical Research Center of Children's Health" of the Ministry of Health of the Russian Federation; I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov Uni-versity), Moscow, Russia

Email: semikinaelena@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8923-4652
SPIN-code: 3647-4967

PhD, MD (Medicine), Chief Research Associate, Head of Laboratory Department; professor of the Department of Pediatrics and Pediatric Rheumatology Pediatric faculty 

Russian Federation, 119991, Moscow, Lomonosovsky prospect, 2 building 1

Valeria S. Tsvetkova

Federal State Autonomous Institution "National Medical Research Center of Children's Health" of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: tsvetkova.valerie@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8162-2957
SPIN-code: 2723-8402

PhD, Researcher, Laboratory of Scientific Fundamentals of Pediatric Gastroenterology and Hepatology, Gastroenterologist, Gastroenterology Department

Russian Federation, 119991, Moscow, Lomonosovsky prospect, 2 building 1

Anastasia E. Krasnovidova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov Uni-versity), Moscow, Russia

Email: dr.krasnovidova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0250-343X
SPIN-code: 2979-7431

PhD Student of the Russian Federation; professor of the Department of Pediatrics and Pediatric Rheumatology Pediatric faculty 

Russian Federation, 119048, Moscow, st. Trubetskaya, 8, building 2

Alexander S. Potapov

Federal State Autonomous Institution "National Medical Research Center of Children's Health" of the Ministry of Health of the Russian Federation;I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov Uni-versity), Moscow, Russia

Email: potapov@nczd.ru
ORCID iD: 0000-0003-4905-2373
SPIN-code: 9507-7419

PhD, MD (Medicine), professor, Head of the Center for Inflammatory Bowel Diseases in Children, Head of the Gastroenterology Department, Chief Researcher of the Laboratory of Scientific Fundamentals of Pediatric Gastroenterology and Hepatology; Professor of the Department of Pediatrics and Pediatric Rheumatology of the Clinical Institute of Child Health named after. N.F. Filatova

Russian Federation, 119991, Moscow, Lomonosovsky prospect, 2 building 1

References

  1. References
  2. Raphael I, Nalawade S, Eagar TN, Forsthuber TG. T cell subsets and their signature cytokines in autoimmune and inflammatory diseases. Cytokine. 2015;74:5–17. doi: 10.1016/j.cyto.2014.09.011.
  3. Cao H, Diao J, Liu H, et al. The Pathogenicity and Synergistic Action of Th1 and Th17 Cells in Inflammatory Bowel Diseases. Inflamm. Bowel Dis. 2023;29(5):818-829. doi: 10.1093/ibd/izac199.
  4. Ghilas S, O’Keefe R, Mielke LA, Raghu D, Buchert M, Ernst M. Crosstalk between epithelium, myeloid and innate lymphoid cells during gut homeostasis and disease. Front. Immunol. 2022;13:944982. doi: 10.3389/fimmu.2022.944982.
  5. Mahapatro M, Erkert L, Becker C. Cytokine-Mediated Crosstalk between Immune Cells and Epithelial Cells in the Gut. Cells. 2021;10(1):111. doi: 10.3390/cells10010111.
  6. Katsandegwaza B, Horsnell W, Smith K. Inflammatory Bowel Disease: A Review of Pre-Clinical Murine Models of Human Disease. Int. J. Mol. Sci. 2022;23:9344. doi: 10.3390/ijms23169344.
  7. Toptygina AP, Semikina EL, Bobyleva GV, Miroshkina LV, Petrichuk SV. Cytokine profile in children with inflammatory bowel disease. Biochemistry. 2014;79(12):1371-1375. (In Russ).
  8. Singh RP, Hasan S, Sharma S, et al. Th17 cells in inflammation and autoimmunity. Autoimmun. Rev. 2014;13(12):1174–1181. doi: 10.1016/j.autrev.2014.08.019.
  9. Zhao J, Lu Q, Liu Y, et al. Th17 Cells in Inflammatory Bowel Disease: Cytokines, Plasticity, and Therapies. J. Immunol. Res. 2021;2021:8816041. doi: 10.1155/2021/8816041.
  10. Toskas A, Milias S, Delis G, Meditskou S, Sioga A, Papamitsou T. Expression of IL-21 and IL-33 in Intestinal Mucosa of Inflammatory Bowel Disease: An Immunohistochemical Study. Diagnostics. 2023;13(13):2185. doi: 10.3390/diagnostics13132185.
  11. Zorzi F, Monteleone I, Sarra M, et al. Distinct profiles of effector cytokines mark the different phases of Crohn’s disease. PLoS ONE 2013;8(1):e54562. doi: 10.1371/journal.pone.0054562.
  12. Shohan M., Dehghani R., Khodadadi A., et al. Interleukin-22 and intestinal homeostasis: Protective or destructive? IUBMB Life 2020;72(8):1585–1602. doi: 10.1002/iub.2295.
  13. Monticelli LA, Osborne LC, Noti M, Tran SV, Zaiss DM, Artis D. IL-33 promotes an innate immune pathway of intestinal tissue protection dependent on amphiregulin-EGFR interactions. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015;112(34):10762–10767. doi: 10.1073/pnas.1509070112.
  14. Mantani PT, Vallejo J, Ljungcrantz I, Nilsson J, Björkbacka H, Fredrikson GN. Interleukin-25 reduces Th17 cells and inflammatory responses in human peripheral blood mononuclear cells. Hum Immunol. 2018;79:685-692. doi: 10.1016/j.humimm.2018.06.008
  15. Fina D, Franzè E, Rovedatti L, et al. Interleukin-25 production is differently regulated by TNF-α and TGF-β1 in the human gut. Mucosal Immunol. 2011;4(2):239-244. doi: 10.1038/mi.2010.68.
  16. Su J, Chen T, Ji XY, et al. IL-25 downregulates Th1/ Th17 immune response in an IL-10-dependent manner in flammatory bowel disease. Inflamm Bowel Dis. 2013;19:720-728. doi: 10.1097/MIB.0b013e3182802a76.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) Toptygina A.P., Semikina E.L., Tsvetkova V.S., Krasnovidova A.E., Potapov A.S.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies