Роль фотобиомодулирующей терапии в уменьшении стресс-индуцированных изменений в гиппокампе у крыс после моделирования септопластики

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Изучение влияние фотобиомодулирующей терапии (ФБМТ) на количество р53 в нейронах пирамидного слоя гиппокампа после моделирования септопластики у крыс. Материалы и методы. У 48 крыс линии Wistar была смоделирована септопластика. В послеоперационном периоде 24 крысам в раннем послеоперационном периоде проводили ФБМТ длительностью от 2 до 6 суток. Было проведено иммуногистохимическое исследование (ИГХ) гистологических срезов гиппокампа с целью определения р53-позитивнх нейронов на 2, 4 и 6 сутки после операции крысам обеих групп. Результаты. По сравнению с контрольной группой (n=5 крыс) в обеих экспериментальных группах произошло увеличение количества р53-позитвных нейронов в гиппокампе (определенных методов ИГХ), однако в группе, где в раннем послеоперационном периоде после моделирования септопластики крысам выполняли ФБМТ, количество данных нейронов было ниже, а в некоторых субполях гиппокампа на 6 сутки даже соответствовало контрольной группе. Заключение. Применение ФБМТ в раннем послеоперационном периоде после моделирования септопластики способствует уменьшению стресс-индуцированной экспрессии белка р53 в пирамидном слое гиппокампа у крыс, тем самым снижая процессы нейродегенерации в данной зоне головного мозга.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

В. Н. Котов

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Автор, ответственный за переписку.
Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

И. В. Кастыро

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

И. Б. Ганьшин

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

В. И. Попадюк

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

С. Г. Драгунова

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

О. С. Ходорович

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

А. Ф. Карташева

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

М. И. Баранник

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

П. В. Сарыгин

ФГАОУ ВО Российский Университет дружбы народов им. П. Лумумбы

Email: fnkc.vladislav@gmail.com
Россия, Москва

Список литературы

  1. Hassin O., Oren M. Drugging p53 in cancer: one protein, many targets. // Nat Rev Drug Discov. 2023; 22 (2): 127-144.
  2. Котов В.Н., Костяева М.Г., Ибадуллаева С.С., Ганьшин И.Б., Ходорович О.С., Карташева А.Ф. Регуляторная роль белка р53 в функциональной активности центральной нервной системы (обзор). // Морфология. 2023; 161 (4): 1–16.
  3. Lindström M.S., Bartek J., Maya-Mendoza A. p53 at the crossroad of DNA replication and ribosome biogenesis stress pathways. // Cell Death Differ. 2022; 29 (5): 972-982.
  4. Кастыро И.В., Хамидулин Г.В., Дьяченко Ю.Е., Костяева М.Г., Цымбал А.А., Шилин С.С., Попадюк В.И., Михальская П.В., Ганьшин И.Б. Исследование экспрессии белка p53 и образования темных нейронов в гиппокампе у крыс при моделировании септопластики. // Российская ринология. 2023; 31 (1): 27-36.
  5. Кастыро И.В., Романко Ю.С., Мурадов Г.М., Попадюк В.И., Калмыков И.К., Костяева М.Г., Гущина Ю.Ш., Драгунова С.Г. Фотобиомодуляция острого болевого синдрома после септопластики Biomedical Photonics. 2021; 10 (2): 34–41.
  6. Wu X., et al. Deep-tissue photothermal therapy using laser illumination at NIR-IIa window. // Nanomicro Lett. 2020;12:38.
  7. Lapchak P.A., Wei J., Zivin J.A. Transcranial infrared laser therapy improves clinical rating scores after embolic strokes in rabbits. // Stroke. 2004; 35 (8): 1985-8.
  8. Ando T., Xuan W., Xu T., Dai T., Sharma S.K., Kharkwal G.B., Huang Y.-Y., Wu Q., Whalen M.J., Sato S. Comparison of therapeutic effects between pulsed and continuous wave 810-nm wavelength laser irradiation for traumatic brain injury in mice. // PLoS One. 2011; 6(10): e26212.
  9. De Taboada L., Yu J., El-Amouri S., Gattoni-Celli S., Richieri S., McCarthy T. Streeter J., Kindy M.S. Transcranial laser therapy attenuates amyloid-β peptide neuropathology in amyloid-β protein precursor transgenic mice. // J Alzheimers Dis. 2011; 23 (3): 521–535.
  10. Oueslati A., Lovisa B. Perrin J., Wagnières G., van den Bergh H., Tardy Y., Lashuel H.A. Photobiomodulation suppresses alpha-synuclein-induced toxicity in an AAV-based rat genetic model of Parkinson’s disease. // PloS One. 2015; 10 (10): e0140880.
  11. Salehpour F., Rasta S.H. The potential of transcranial photobiomodulation therapy for treatment of major depressive disorder. // Rev Neurosci. 2017; 28 (4): 441–453.
  12. Karu T. Primary and secondary mechanisms of action of visible to near-IR radiation on cells. J Photochem Photobiol B. 1999;49:1–17.
  13. Zomorrodi R., Loheswaran G., Pushparaj A., Lim L. Pulsed Near Infrared Transcranial and Intranasal Photobiomodulation Significantly Modulates Neural Oscillations: a pilot exploratory study. // Sci Rep. 2019; 9 (1): 6309.
  14. Greaney J.L., Surachman A., Saunders E.F.H., Alexander L.M., Almeida D.M. Greater Daily Psychosocial Stress Exposure is Associated With Increased Norepinephrine-Induced Vasoconstriction in Young Adults. // J Am Heart Assoc. 2020; 9 (9): e015697.
  15. Salehpour F., Mahmoudi J., Kamari F., Sadigh-Eteghad S., Rasta S.H., Hamblin M.R. Brain Photobiomodulation Therapy: a Narrative Review. // Mol Neurobiol. 2018; 55 (8): 6601-6636.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Динамика изменения р53-позитивных нейронов после моделирования септопластики и применения ФБМТ в субполе (а) СА1, (б) СА2, (в) СА3 гиппокампа. * – различия между сроками в экспериментальных группах (p < 0.001); † – различия между сроками в экспериментальных группах (p < 0.01); ‡ – различия между сроками в экспериментальных группах (p < 0.05); ○ – различия между экспериментальными группами на разных сроках (p < 0.001); • – различия между экспериментальными группами на разных сроках (p < 0.01); ◊ – различия между экспериментальными группами на разных сроках (p < 0.05); ∆ – различия между интактной (1-й группой) и экспериментальными группами (p < 0.001); □ – различия между интактной (1-й группой) и экспериментальными группами (p < 0.01); ⌂ – различия между интактной (1-й группой) и экспериментальными группами (p < 0.05).

Скачать (120KB)

Примечание

Представлено академиком РАН И.В. Решетовым


© Российская академия наук, 2025