АКТИВАЦИЯ АНГИОТЕНЗИН-ПРЕВРАЩАЮЩЕГО ФЕРМЕНТА ВНОСИТ СУЩЕСТВЕННЫЙ ВКЛАД В ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС В АОРТЕ КРЫС С ДИАБЕТОМ, ИНДУЦИРОВАННЫМ АЛЛОКСАНОМ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Изучены изменения активности ангиотензин-превращающего фермента и продукции активных форм кислорода в аорте крыс при индукции диабета введением аллоксана. Активность ангиотензин-превращающего фермента в отрезках аорты определяли по гидролизу гиппурил-L-гистидил-L-лейцина, а образование активных форм кислорода – по окислению дихлордигидрофлуоресценна. Показано, что активность ангиотензин-превращающего фермента возрастает с ростом концентрации глюкозы в крови до максимального значения при концентрации глюкозы 12 мМ и не увеличивается с дальнейшим ростом уровня глюкозы. В отличие от активности ангиотензин-превращающего фермента, образование активных форм кислорода увеличивается с ростом концентрации глюкозы во всем исследованном интервале концентраций (до 24 мМ). Опыты с эналаприлом, ингибитором ангиотензин-превращающего фермента, показали, что он полностью предотвращает увеличение скорости образования активных форм кислорода до концентрации глюкозы 12 мМ (100%-й вклад активации ангиотензин-превращающего фермента в увеличение образования активных форм кислорода), однако далее эффективность эналаприла падает (вклад активации ангиотензин-превращающего фермента в увеличение образования активных форм кислорода – около 30%).

Об авторах

Т. В Самохвалова

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Пущино, Россия

А. Ф Корыстова

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Пущино, Россия

В. В Шапошникова

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Пущино, Россия

Ю. Н Корыстов

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Email: ykorystov@rambler.ru
Пущино, Россия

Список литературы

  1. Danaei G., Finucane M. M., Lu Y., Singh G. M., Cowan M. J., Paciorek C. J., Lin J. K., Farzadfar F., Khang Y.-H., Stevens G. A., Rao M., Ali M. K., Riley L. M., Robinson C. A., and Ezzati M. National, regional, and global trends in fasting plasma glucose and diabetes prevalence since 1980: systematic analysis of health examination surveys and epidemiological studies with 370 country-years and 27 million participants. Lancet, 378 (1), 31–40 (2011). doi: 10.1016/S0140-6736[11]60679-X
  2. Delbin M. A. and Trask A. J. The diabetic vasculature: Physiological mechanisms of dysfunction and influence of aerobic exercise training in animal models. Life Sci., 102 (1), 1–9 (2014). doi: 10.1016/j.lfs.2014.02.021
  3. Giugliano D., Ceriello A., and Paolisso G. Oxidative stress and diabetic vascular complications. Diabetes Care, 19 (3), 257–267 (1996). doi: 10.2337/diacare.19.3.257
  4. De Vriese A. S., Verbeuren T. J., Van de Voorde J., Lameire N. H., and Vanhoutte P. M. Endothelial dysfunction in diabetes. Br. J. Pharmacol., 130 (5), 963–974 (2000). doi: 10.1038/sj.bjp.0703393
  5. Kayama Y., Raaz U., Jagger A., Adam M., Schellinger I. N., Sakamoto M., Suzuki H., Toyama K., Spin J. M., and Tsao P. S. Diabetic cardiovascular disease induced by oxidative stress. Int. J. Mol. Sci., 16, 25234–25263 (2015). DOI: 103390/ijms101025234
  6. Sharifi A. M., Mousavi S. H., and Larijani B. Study of interaction between nitric oxide and ACE activity in STZ-induced diabetic rats: role of insulin. Pharmacol. Res., 50 (3), 261–266 (2004). doi: 10.1016/j.phrs.2004.02.009
  7. Fiordaliso F., Cuccovillo I., Bianchi R., Bai A., Doni M., Salio M., De Angelis N., Ghezzi P., Latini R., and Masson S. Cardiovascular oxidative stress is reduced by an ACE inhibitor in a rat model of streptozotocin-induced diabetes. Life Sci., 79 (1), 121–129 (2006). doi: 10.1016/j.lfs.2005.12.036
  8. Griendling K. K., Minieri C. A., Ollerenshaw J. D., and Alexander R. W. Angiotensin II stimulates NADH and NADPH oxidase activity in cultured vascular smooth muscle cells. Circ. Res., 74 (6), 1141–1148 (1994). doi: 10.1161/01.RES.74.6.1141
  9. Landmesser U., Cai H., Dikalov S., McCann L., Hwang J., Jo H., Holland S. M., and Harrison D. G. Role of p47phox in vascular oxidative stress and hypertension caused by angiotensin II. Hypertension, 40 (4), 511–515 (2002). doi: 10.1161/01.HYP.0000032100.23772.98
  10. Arutyunyan T. V., Korystova A. F., Kublik L. N., Levitman M. Kh., Shaposhnikova V. V., and Korystov Yu. N. Taxifolin and fucoidin abolish the irradiation-induced increase in the production of reactive oxygen species in rat aorta. Bull. Exp. Biol. Med., 160 (5), 635–638 (2016). doi: 10.1007/s10517-016-3236-2
  11. Korystova A. F., Kublik L. N., Samokhvalova T. V., Shaposhnikova V. V., and Korystov Yu. N. Black tea is more effective than green tea in prevention of radiation-induced oxidative stress in the aorta of rats. Biomed. Pharmacother., 142, 112064 (2021). doi: 10.1016/j.biopha.2021.112064
  12. Samokhvalova T. V., Kim Y. A., Korystova A. F., Kublik L. N., Shaposhnikova V. V., and Korystov Yu. N. [+]-Catechin stereoisomer and gallate induce oxidative stress in rat aorta. Molecules, 27, 3379 (2022). DOI: 103390/molecules27113379
  13. Korystov Yu. N., Emel’yanov M. O., Korystova A. F., Levitman M. Kh., and Shaposhnikova V. V. Determination of reactive oxygen and nitrogen species in rat aorta using the dichlorofluorescein assay. Free Radic. Res., 43 (2), 149–155 (2009). doi: 10.1080/10715760802644686
  14. Mahesh T. and Menon V. P. Quercetin alilevates oxidative stress in streptozotocin-induced diabetic rats. Phytother. Res., 18 (2), 123–127 (2004). doi: 10.1002/ptr.1374
  15. Garcia-Pedraza J.-A., Ferreira-Santos P., Aparicio R., Montero M.-J., and Morán A. Blocking 5-HT2 receptor restores cardiovascular disorders in type 1 experimental diabetes. Sci. Rep., 6, 33979 (2016). doi: 10.1038/srep33979
  16. Obasi D. C. and Ogugua V. N. GC-MS analysis, pH and antioxidant effect of Ruzu herbal bitters on alloxan-induced diabetic rats. Biochem. Biophys. Rep., 27, 101057 (2021). doi: 10.1016/j.bbrep.2021.101057
  17. de Cavanagh E. M. V., Inserra F., Tobili J., Stella I., Fraga C. G., and Ferder L. Enalapril attenuates oxidative stress in diabetic rats Hypertension, 38 (5), 1130–1136 (2001). doi: 10.1161/hy1101.092845
  18. Anikina V. A., Kim Y. A., Korystova A. F., Levitman M. Kh., Shaposhnikova V. V., and Korystov Y. N. Effects of catechin on activity of angiotensin-converting enzyme and generation of reactive oxygen species in rat aorta. Bull. Exp. Biol. Med., 168, (11), 565–568 (2019). doi: 10.1007/s10517-020-04766-0
  19. Hadcocks S., Richardson M., Winocour P., and Hatton M. W. C. Intimal alterations in the first six months of alloxan-induced diabetes. Arterioscler. Thromb., 11 (3), 517–529 (1991). doi: 10.1161/01.ATV.11.3.517
  20. Kim J. A., Berliner J. A., Natarajan R. D., and Nadler J. L. Evidence that glucose increases monocyte binding to human aortic endothelial cells. Diabetes, 43 (9), 1103–1107 (1994). doi: 10.2337/diab.43.9.1103

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025