Активность протеаз в тонком кишечнике атлантического глупыша Fulmarus glacialis при инвазии Tetrabothrius minor (Cestoda: Tetrabothriidae)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Изучено влияние инвазии Tetrabothrius minor (Cestoda: Tetrabothriidae) на протеолитическую активность в слизистой оболочке тонкого кишечника атлантического глупыша Fulmarus glacialis. Рассмотрены аспекты изменения общей активности протеаз и протеаз различных подклассов (металлопротеаз, сериновых и цистеиновых протеаз) при инвазии тетработриидами, проведена оценка способности T. minor инактивировать протеазы из слизистой оболочки кишечника птиц и коммерческий трипсин. Установлено, что в местах локализации T. minor (проксимальных и медиальных фрагментах тонкого кишечника) протеолитическая активность снижена за счет уменьшения активности сериновых протеаз и металлопротеаз. Обнаружена обратная зависимость значений протеолитической активности в слизистой оболочке тонкого кишечника хозяина от показателей заражения цестодами – чем выше интенсивность инвазии T. minor, тем ниже активность протеаз, в том числе металлопротеаз и сериновых протеаз. Отмечены способность гомогенатов T. minor ингибировать активность протеаз из слизистой оболочки кишечника глупыша и активность коммерческого трипсина разной концентрации.

Об авторах

М. М. Куклина

Мурманский морской биологический институт РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: MM_Kuklina@mail.ru
Россия, Мурманск

В. В. Куклин

Мурманский морской биологический институт РАН

Email: MM_Kuklina@mail.ru
Россия, Мурманск

Список литературы

  1. Белопольский ЛО (1957) Экология морских колониальных птиц Баренцева моря. М.; Л.: Изд-во РАН 460 с. [Belopolyski LO (1957) Ecology of marine colonial birds of the Barents Sea. M., L.: Publ. PAS. 460 p. (In Russ.)].
  2. Kuklin VV, Kuklina MM, Ezov AV (2018) Helminths of the Barents Sea Northern Fulmar (Fulmarus glacialis, Procellariiformes, Procellariidae): Composition, Impact on Host, and Indicator Properties. Biology Bulletin 46: 804–813. https://doi.org/10.1134/S1062359019080077
  3. Гаврило МВ, Тертицкий ГМ, Покровский ИВ, Головкин АН (1994) Орнитофауна архипелага. Среда обитания и экосистемы Земли Франца-Иосифа (Архипелаг и шельф). Апатиты: Изд. КНЦ РАН: 204–211. [Gavrilo MV, Tertitski GM, Pokrovski IV, Golovkin AN (1994) Ornithofauna of the archipelago. Habitat and ecosystems of Franz Josef Land (Archipelago and shelf). Apatity: Publ. KSC RAS: 204–211. (In Russ)].
  4. Anker-Nilssen T, Bakken V, Strøm H, Golovkin AN, Bianki VV, Tatarinkova IP (2000) The status of marine birds breeding in the Barents Sea Region. Tromso: Norsk Polarinstitutt. 216 p. https://doi.org/10.2307/1522196
  5. Куклина ММ (2015) Взаимоотношения в системе “атлантический глупыш Fulmarus glacialis – цестода Tetrabothrius minor (Cestoda: Tetrabothriidae)”: физиологические аспекты. Паразитология 49: 433–443. [Kuklina MM (2015) Relationships in the “northern fulmar Fulmarus glacialis – Tetrabothrius minor (Cestoda: Tetrabothriidae)” system: physiological aspects. Parasitology 49: 433–443. (In Russ)].
  6. Извекова ГИ, Куклина ММ (2014) Заражение цестодами и активность пищеварительных гидролаз позвоночных хозяев. Успехи современной биологии 134 (3): 304–315. [Izvekova GI, Kuklina MM (2014) Infection with cestodes and the activity of digestive hydrolases of vertebrate hosts. Successes of modern biology 134 (3): 304–315. (In Russ)].
  7. Фролова ТВ, Извекова ГИ (2018) Влияние заражения цестодой Proteocephalus torulosus Batsch, 1786 на активность ферментов в кишечнике синца (Ballerus ballerus). Паразитология 52: 292–303. [Frolova TV, Izvekova GI (2018) The influence of cestode infection with Proteocephalus torulosus Batsch, 1786 on the enzyme activity in the intestine of the zope (Ballerus ballerus). Parasitology 52: 292–303. (In Russ)]. https://doi.org/10.7868/S0031184718040042
  8. Kuklina MM, Kuklin VV (2018) Effect of Cestodal Infestation on the Distribution Pattern of Digestive Enzyme Activities along the Small Intestine of the Kittiwake (Rissa tridactyla). J Evol Biochem Physiol 54: 292–299. https://doi.org/10.1134/S0022093018040051
  9. Izvekova GI, Solovyev MM (2016) Characteristics of the Effect of Cestodes Parasitizing the Fish Intestine on the Activity of the Host Proteinases. Biol Bull 43 (2): 146–151. https://doi.org/10.1134/S1062359016010076
  10. Frolova TV, Izvekov EI, Solovyev MM, Izvekova GI (2019) Activity of proteolytic enzymes in the intestine of bream Abramis brama infected with cestodes Caryophyllaeus laticeps (Cestoda, Caryophyllidea). Compar Biochem Mol Biol Part B 235: 38–45. https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2019.05.009
  11. Kuklina MM, Kuklin VV (2016a) Diphyllobothrium dendriticum (Cestoda: Diphyllobothriidae) in the intestinal tract of the herring gull Larus argentatus: Localization and trophic parameters. Biol Bull 43: 329–334. https://doi.org/10.1134/S1062359016040063
  12. Kuklina MM, Kuklin VV (2016b) The activities of digestive enzymes as a determinant factor in the localization of Tetrabothrius erostris (Loennberg) (Cestoda: Tetrabothriidae) in the intestine of the herring gull Larus argentatus Pontoppidan. Inland Water Biol 9: 189–195. https://doi.org/10.1134/S1995082916010107
  13. Kuklina MM, Kuklin VV (2022) Activity of Digestive Enzymes in the Small Intestine of the Common and Thick-Billed Murres: Effect of Dietary Composition and Helminth Infection. J Evol Biochem Physiol 58: 1785–1794. https://doi.org/10.311134/S0022093022060102
  14. Alarcón FJ, Martínez TF, Barranco P, Cabello T, Díaz M, Moyano FJ (2002) Digestive proteases during development of larvae of red palm weevil, Rhynchophorus errugineus (Olivier, 1790) (Coleoptera: Curculionidae). Insect Biochem Mol Biol 32: 265–274. https://doi.org/10.1016/s0965-1748(01)00087-x
  15. Afik DL, Caviedes-Vidal E, Martínez del Rio C, Karasov WH (1995) Dietary modulation of intestinal hydrolytic enzymes in yellow-rumped warblers. Am J Physiol 269: 420–423. https://doi.org./10.1152/ajpregu.1995.269.2.R413
  16. Caviedes-Vidal E, Afik D, Martinez del Rio C, Karasov WH (2000) Dietary modulation of intestinal enzymes of the house sparrow (Passer domesticus): testing an adaptive hypothesis. Compar Biochem Physiol Part A 125: 11–24. https://doi.org/10.1016/S1095-6433(99)00163-4
  17. Chediack JG, Furres SC, Cid FD, Filippa V, Caviedes-Vidal E (2012) Effect of fasting on the structure and function of the gastrointestinal tract of house sparrows (Passer domesticus). Compar Biochem Physio Part A 163: 103–110. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2012.05.189
  18. Izvekova GI, Solovyov MM, Izvekov EI (2011) Effect of Caryophyllaeus laticeps (Cestoda, Caryophyllidea) upon Activity of Digestive Enzymes in Bream. Biol Bull 38: 50–56. https://doi.org/10.1134/S1062359011010055
  19. Izvekova GI (2013) Activity of digestive enzymes in burbots Lota lota (Linnaeus) depending on their infestation with Eubothrium rugosum (Batch) (Cestoda, Pseudophyllidea). Inland Water Biol 6 (1): 57–61. https://doi.org/10.1134/S1995082913010069
  20. Dalton JP, Skelly P, Halton DW (2004) Role of the tegument and gut in nutrient uptake by parasitic platyhelminths. Can J Zool 82: 211–232. https://doi.org/10.1139/z03-213
  21. Izvekova GI, Frolova TV, Izvekov EI (2017) Adsorption and inactivation of proteolytic enzymes by Triaenophorus nodulosus (Cestoda). Helminthologia 54 (1): 3–10. https://doi.org/10.1515/helm-2017-0001
  22. Izvekova GI, Kuklina MM, Frolova TV (2017) Inactivation of proteolytic enzymes by cestodes. Dokl Biol Sci 475: 161–164. https://doi.org/10.1134/S0012496617040081

Дополнительные файлы


© М.М. Куклина, В.В. Куклин, 2023